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Friedrich-Alexander-Universität Institut und Poliklinik für Arbeits-, Sozial- und Umweltmedizin IPASUM
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Laboratorien

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Laboratorien

Labor für

Organische Analytik

Leitung

Prof. Dr. rer. nat. Thomas Göen

  • Telefon: +49 9131 85-26121
  • E-Mail: thomas.goeen@fau.de

Technische Ausstattung

Gaschromatographische Analysensysteme (GC)

Agilent 7000 Series Triple Quadrupole GC-MS/MS; (Agilent Technologies)
Hochauflösendes Gaschromatographie-Tandem-Massenspektrometrie System
ausgestattet mit EI- und PCI/NCI-Ionenquelle

Agilent GC-MSD (7890A GC + 5975C MS) (Agilent Technologies)
Hochauflösendes Gaschromatographie-Massenspektrometrie System
ausgestattet mit EI- und PCI/NCI-Ionenquelle & CombiPAL Autosampler (CTC Analytics)

Headspace GC-MS: Agilent GC-MSD (7890A GC + 5975C MS) (Agilent Technologies)
Hochauflösendes Gaschromatographie-Massenspektrometrie System
ausgestattet mit Perkin Elmer Turbo Matrix 40 Trap Headspace Autosampler

HP GCD (G1800A) (Hewlett-Packard)
Hochauflösendes Gaschromatographie-Massenspektrometrie System

HP 5890 Series II (MS 5989A) (Hewlett-Packard)
Hochauflösendes Gaschromatographie-Massenspektrometrie System
ausgestattet mit EI- und CI-Ionenquelle

HP 5890 Series II Plus (MS 5989A) (Hewlett-Packard)
Hochauflösendes Gaschromatographie-Massenspektrometrie System

Varian GC 3400 FID/ECD (Varian Inc.)
Hochauflösendes Gaschromatographie System mit Flammenionisations- & Elektroneneinfang-Detektor

Varian GC 3400 FID (Varian Inc.)
Hochauflösendes Gaschromatographie System mit Flammenionisations-Detektor

Varian GC 3300 Headspace-FID/ECD (Varian Inc.)
Hochauflösendes Gaschromatographie System mit Flammenionisations- & Elektroneneinfang-Detektor
ausgestattet mit einem Headspace Probengeber Typ HSS 3950 (DANI SpA)

 

Flüssigkeitschromatographische Analysensysteme (LC)

HPLC-MS/MS System; (Agilent Technologies, Applied Biosystems)
Hochauflösende Flüssigkeitschromatographie-Anlage HP 1100 mit quarternärer Pumpe P1 (G 1311A), Autosampler (G 1313A) und Vakuumentgaser (G 1322A)
gekoppelt mit Tandem-Massenspektrometer Sciex API 2000 mit softwaregesteuertem 10-Wege-Ventil und Elektrospray-Ionisierung (ESI)-Interface

VWR LaChrom Elite HPLC-FLD; (VWR)
Hochauflösende Flüssigkeitschromatographie-Anlage mit Fluoreszenz-Detektor (FLD) L-2485

Merck LaChrom HPLC-FLD; (Merck)
Hochauflösende Flüssigkeitschromatographie-Anlage mit Fluoreszenz-Detektor (FLD) L-7480

2x Merck LaChrom HPLC-DAD; (Merck)
Hochauflösende Flüssigkeitschromatographie-Anlage mit Dioden-Array-Detektor (DAD) L-7450A

Merck LaChrom HPLC-FLD/UV; (Merck)
Hochauflösende Flüssigkeitschromatographie-Anlage mit Fluoreszenz-Detektor (FLD) L-7480 & UV-Detektor L7400

Methoden

Spurenanalytik in humanem Probenmaterial (Urin, Blut, Serum, Gewebe)

Acrylamid / Acrylnitril

Aminoalkohole / Kühlschmierstoffe

Aromatische Amine

Organophosphat-Flammschutzmittel (OPFSM)

Pflanzenschutz- und Schädlingsbekämpfungsmittel (PSM)

endokrine Disruptoren (Phthalate/Weichmacher, Bisphenol A, Isoflavone)

Polychlorierte Biphenyle (PCB)

Polyzyklische aromatische Kohlenwasserstoffe (PAK)

Perfluorierte Tenside (PFT)

Monoterpene

Aromaten

flüchtige organische Verbindungen (VOC)

Team

Prof. Dr. rer. nat. Thomas Göen

  • Telefon: +49 9131 85-26121
  • E-Mail: thomas.goeen@fau.de

PD Dr. Elisabeth Eckert

  • Telefon: +49 9131 85-26127
  • E-Mail: elisabeth.eckert@fau.de

Dr. rer. nat. Anja Schäferhenrich

  • Telefon: +49 9131 85-26143
  • E-Mail: anja.schaeferhenrich@fau.de

Irene Bayer

  • Telefon: 85-2612885-22365
  • E-Mail: irene.bayer@fau.de

Annette Braun

  • Telefon: +49 9131 85-22365
  • E-Mail: annette.braun@fau.de

Es konnte kein Kontakteintrag mit der angegebenen ID 401 gefunden werden.

Dr. rer. nat. Kerstin Hof

  • Telefon: +49 9131 85-26272
  • E-Mail: kerstin.hof@fau.de

Es konnte kein Kontakteintrag mit der angegebenen ID 409 gefunden werden.

Johannes Müller

  • Telefon: +49 9131 85-22365
  • E-Mail: hannes.mueller@fau.de

Anorganische Analytik

Leitung

Prof. Dr. rer. nat. Thomas Göen

  • Telefon: +49 9131 85-26121
  • E-Mail: thomas.goeen@fau.de

Technische Ausstattung

Probenvorbereitung

Multiwave 3000™ (Anton Paar)
Mikrowellen-Aufschlussgerät zur Nassveraschung im geschlossenen System

 

instrumentelle Analysensysteme

ICP-MS Agilent 7500 cx™ (Agilent Technologies)
Induktiv gekoppeltes Plasma-Massenspektrometer mit dynamischer Reaktionszelle

HPLC Agilent 1200 Series™ (Agilent Technologies)
Hochleistungsflüssigkeitschromatographie System für die Kopplung mit der ICP-MS

Methoden

Elementanalytik in humanem Probenmaterial (Urin, Blut, Serum, Gewebe)

Elementspeziesanalytik in humanem Probenmaterial
Hochleistungsflüssigkeitschromatographie gekoppelt mit der induktiv gekoppelten Plasma-Massenspektrometrie mit dynamischer Reaktionszelle (HPLC-DRC-ICP-MS)

Team

Prof. Dr. rer. nat. Thomas Göen

  • Telefon: +49 9131 85-26121
  • E-Mail: thomas.goeen@fau.de

Irene Bayer

  • Telefon: 85-2612885-22365
  • E-Mail: irene.bayer@fau.de

Pulane Rauh

  • Telefon: +49 9131 85-26128
  • E-Mail: pulane.rauh@fau.de

Moritz Schäfer

  • Telefon: +49 9131 85-26149
  • E-Mail: moritz.schaefer@fau.de

Karin Seitz

  • Telefon: +49 9131 85-26124
  • E-Mail: karin.seitz@g-equas.de

Barbara Verhoeven

  • Telefon: +49 9131 85-26128
  • E-Mail: barbara.verhoeven@fau.de

Hautpenetration

Leitung

PD Dr. med. Sonja Kilo

  • Telefon: +49 9131 85-26129
  • E-Mail: sonja.kilo@fau.de

Technische Ausstattung

Diffusionszellsystem

  • Franzzellen, (Permegear Europe, SES GmbH Analysesysteme) ummantelte Diffusionszellen, (5 ml Kammervolumen, Expositionsfläche 9 mm Durchmesser)
  • Wasserbad (MV-4; Julabo Labortechnik GmbH) zirkulierend, thermostatisch geregelt, temperiert die Franzzelle über die wassergefüllte Ummantelung
  • Variomag Multipoint 15 (H+P Labortechnik GmbH) Magnetrührplatte, kontinuierliches durchmischen der Rezeptorlösung der Franzzelle

Mikrodialysesystem

  • PHD 2000 Infusion (Harvard Apparatus, Holliston, USA)
  • PHD 2000 Programmable (Harvard Apparatus, Holliston, USA)
    Spritzenpumpen, (0,0001 µl/h bis 220,82 ml/min)

Hautzustands-Messung

  • Iso-Tech LCR 819 (RS-Components GmbH)
    LCR:  Induktivität (L)  Kapazität (C)  Widerstand (R) elektrische Hautwiderstandsmessung
  • MPA 5 (Courage + Khazaka electronic GmbH)
    Tewameter Transepidermaler Wasserverlust
    Corneometer Hautfeuchtigkeit
    Sebumeter Sebum der Hautoberfläche
  • Chroma Meter CR-400 (Konica Minolta)
    Reflexionsfarbmessungen und Farbdifferenzmessungen (Kolorimetrie, Messöffnung: 8 mm) Messung der Hautfärbung

Temperatur-Messung

  • RDXL6SD Datenlogger für Temperaturen (Omega Engineering GmbH)
    Miniaturtemperaturfühler (Omega Engineering GmbH) intradermale Temperaturmessung
    GOF 500 Universalfühler, Typ K (-65…+500 °C) (Greisinger electronic) Oberflächentemperaturmessung – Kontakt
  • Optris®LS Infrarot-Handthermometer (Optris GmbH) Oberflächentemperaturmessung – berührungslos

pH-Messung

  • pH-Meter SevenCompactTM (Mettler-Toledo GmbH)
    Microminiature pH-Elektrode IC 401 (Multi Channel Systems GmbH, a division of Harvard Bioscience, Inc.) intradermale pH-Messung
  • Temperature compensation Type 30 K pH-Elektrode (VWR)

Dermatom

  • TC-Motor 3000 (Nouvag® GmbH, Konstanz) Mikroprozessor gesteuertes Motorsystem (max. Motordrehzahl: 30.000 Upm)
    Dermatom 25 (Schnittbreite 25 mm; Schnittdicke: 0,5-0,55 mm, 0,05 mm Schritte; max. Motordrehzahl: 8.000 Upm)

Homogenisator/Dispergierer

  • Ultra-Turrax T8 (IKA®- Werke GmbH & Co. KG)
    S 8 N- 8G (Durchmesser Stator: 8 mm)

Weitere Labor-Grundgeräteausstattung

Präzisions-Waage:  Analysewaage XA105 DualRange (Mettler-Toledo GmbH)
Magnetrührer, Heizplatte, Vortexer, Kreisschüttler …..

Methoden

1. Diffusionszell-Methode (nach Franz 1975)

Exzidierte Humanhaut zwischen Expositions- und Rezeptorkammer (mit physiologischer Lösung gefüllt eingespannt (siehe Abbildung 1).  Die Rezeptorkammer wird temperiert und die Hauttemperatur i.d.R. auf 32°C erwärmt.

Abbildung1: Statischen Diffusionszelle nach Franz TJ (Percutaneus absorption. On the relevance of in vitro data. J Invest Dermatol 64:190-195).

Nach Applikation einer Substanz auf die Haut können verschiedene Parameter untersucht werden.

Penetration durch die Haut:

Zu definierten Zeitpunkten kann eine Probe aus der Rezeptorkammer entnommen werden und auf ihren Gehalt an applizierter Substanz analysiert werden.

Penetration in die Haut:

Die eingespannte Haut kann entnommen werden und auf ihren Gehalt an applizierter Substanz analysiert werden.

Hautschädigung:

Die eingespannte Haut kann entnommen werden und ihre Struktur histologisch untersucht werden.

Biochemische Reaktionen:

Zu definierten Zeitpunkten kann eine Probe aus der Rezeptorkammer entnommen werden und auf ihren Gehalt an bestimmten Markern (z.B. Interleukine) untersucht werden.

Metabolische Reaktionen:

Zu definierten Zeitpunkten kann eine Probe aus der Rezeptorkammer entnommen werden und auf ihren Gehalt an, aus der applizierten Substanz gebildete Metabolite untersucht werden

2. Mikrodialyse Technik

Ein Mikrodialyseschlauch wird in exzidierter Humanhaut eingelegt, mit einer Perfusionslösung durchspült und das Perfusat (fraktioniert) gesammelt (Abbildung 2). Substanzen können direkt auf die Haut appliziert werden (Abb. 2a) oder unter Umgehung des Stratum corneum zu exakt definierten Zeitpunkten über die Perfusionslösung direkt in die Haut eingebracht werden (Abb. 2b).

Je nach Fragestellung bietet sich diese Technik als Alternative zur Diffusionszelluntersuchung an.

Abbildung 2: Mikrodialyse-Technik.

Nach Applikation einer Substanz auf die Haut können verschiedene Parameter untersucht werden.

Penetration in die Haut:

Das Perfusat kann über definierte Zeiträume gesammelt werden und auf den Gehalt an applizierter Substanz analysiert werden.

Hautschädigung:

Die Haut kann entnommen werden und ihre Struktur histologisch untersucht werden (Cave: mechanische Schädigung durch das Einlegen des Mikrodialyseschlauchs).

Biochemische Reaktionen:

Das Perfusat kann über definierte Zeiträume gesammelt werden und auf den Gehalt an bestimmten Markern (z.B. Interleukine) untersucht werden.

Metabolische Reaktionen:

Das Perfusat kann über definierte Zeiträume gesammelt werden und auf den Gehalt an, aus der applizierten Substanz gebildete Metabolite untersucht werden.

3. Weitere Untersuchungstechniken

Elektrische Hautwiderstandsmessung

Bestimmung des Transepidermaler Wasserverlust

Bestimmung der Hautfeuchtigkeit

Sebumbestimmung auf der Hautoberfläche

Messung der Hautfärbung

Intradermale pH Wertmessung

Intradermale Temperaturmessung

Biomarker in der Arbeitsmedizin

Leitung

Prof. Dr. med. Simone Schmitz-Spanke

  • Telefon: +49 9131 85-22255
  • E-Mail: simone.schmitz-spanke@fau.de
FAU Erlangen-Nürnberg
Institut u. Poliklinik für Arbeits-,

Sozial- und Umweltmedizin
Henkestraße 9 – 11
91054 Erlangen
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